корекція деформацій молочних залоз із застосуванням клітинних технологій затребуваний напрямок медичної діяльності. Однак відомості про результати трансплантації аутологічної жирової тканини (АЖТ), збагаченої стовбуровими клітинами (СК) для вдосконалення форми і об'єму молочних залоз, розглядаються дослідниками не тільки як операція, яка виконується за естетичними показниками, а й як засіб усунення деформацій МЗ в форматі реконструктивної хірургії. Необхідність багатогранної оцінки досвіду застосування мезенхімальних СК (МСК) з аутологічної жирової тканини в пластичної та реконструктивної хірургії молочної залози спонукає до критичного вивчення результатів діяльності багатьох вчених, цілеспрямовано застосовують технології регенеративної медицини у випадках проведення хірургічних втручань на gl.mammae. Проаналізовано рекомендації дослідників про методичні основи ізоляції МСК з АЖТ. Цілеспрямовано вивчені дані про цитологічних критерії віднесення біологічних субстратів до стовбурових клітин. Критично осмислений досвід фахівців з трансплантації СК, що виділяються з АЖТ, у випадках необхідності виконання пластичних операцій на молочних залозах.

Анотація наукової статті з біотехнологій в медицині, автор наукової роботи - Романенков Н.С., Мовчан К.М., Русакевич К.И.


ANATOMO-PHYSIOLOGICAL JUSTIFICATION FOR PERSPECTIVES OF AUTOLOGOUS FAT ENRICHED WITH STEM CELLS APPLICATION IN PLASTIC BREAST SURGERY

Breast deformities correction using cellular technologies is a promising direction of medical science. Nevertheless, information on the improvement of mammary glands shape and volume with autologous fat tissue enriched with stem cells (SC) is ambiguous. Different researchers perform such surgeries both in aesthetic and reconstructive cases. The necessity of versatile assessment of different researcher's experience in cases of adipose derived stem cells (ADSC) application in plastic and reconstructive breast surgery prompts a critical study of scientific papers devoted to the use of regenerative medicine technologies in breast surgery cases. Recommendations of the researchers on the methods of ADSC isolation from autologous fat tissue are examined thoroughly. Cytological criteria of biological substrate being qualified as stem cells are studied as well. The experience of many authors in ADSC transplantation in cases of plastic breast surgery is analysed.


Область наук:

  • Біотехнології в медицині

  • Рік видавництва: 2018


    Журнал: Вісник Новгородського державного університету ім. Ярослава Мудрого


    Наукова стаття на тему 'АНАТОМО-ФІЗІОЛОГІЧНЕ ОБГРУНТУВАННЯ ПЕРСПЕКТИВ ЗАСТОСУВАННЯ АУТОЛОГІЧНОЇ жирової тканини, збагачення стовбурові клітини, ПРИ ПЛАСТИЧНИХ ОПЕРАЦІЇ НА молочної залози (ОГЛЯД ЛІТЕРАТУРИ)'

    Текст наукової роботи на тему «АНАТОМО-ФІЗІОЛОГІЧНЕ ОБГРУНТУВАННЯ ПЕРСПЕКТИВ ЗАСТОСУВАННЯ АУТОЛОГІЧНОЇ жирової тканини, збагачення стовбурові клітини, ПРИ ПЛАСТИЧНИХ ОПЕРАЦІЇ НА молочної залози (ОГЛЯД ЛІТЕРАТУРИ)»

    ?УДК 611.018.26: 612.014.2: 617.5-089.844

    АНАТОМО-ФІЗІОЛОГІЧНЕ ОБГРУНТУВАННЯ ПЕРСПЕКТИВ ЗАСТОСУВАННЯ АУТОЛОГІЧНОЇ жирової тканини, збагачення стовбурові клітини, ПРИ ПЛАСТИЧНИХ ОПЕРАЦІЇ НА молочної залози (ОГЛЯД ЛІТЕРАТУРИ)

    Н.С.Романенков, К.Н.Мовчан, * К.І.Русакевіч

    ANATOMO-PHYSIOLOGICAL JUSTIFICATION FOR PERSPECTIVES OF AUTOLOGOUS FAT ENRICHED WITH STEM CELLS APPLICATION IN PLASTIC BREAST SURGERY

    N.S.Romanenkov, K.N.Movchan, * K.I.Rusakevich

    Північно-Західний державний медичний університет ім. І.І.Мечникова (Санкт-Петербург), * Інститут медичної освіти новго, Ця електронна адреса захищена від спам-ботів. Вам потрібно увімкнути JavaScript, щоб побачити її.

    Корекція деформацій молочних залоз із застосуванням клітинних технологій - затребуваний напрямок медичної діяльності. Однак відомості про результати трансплантації аутологічної жирової тканини (АЖТ), збагаченої стовбуровими клітинами (СК) для вдосконалення форми та об'єму молочних залоз, розглядаються дослідниками не тільки як операція, яка виконується за естетичними показниками, а й як засіб усунення деформацій МЗ в форматі реконструктивної хірургії. Необхідність багатогранної оцінки досвіду застосування мезенхімальних СК (МСК) з аутологічної жирової тканини в пластичної та реконструктивної хірургії молочної залози спонукає до критичного вивчення результатів діяльності багатьох вчених, цілеспрямовано застосовують технології регенеративної медицини у випадках проведення хірургічних втручань на gl.mammae. Проаналізовано рекомендації дослідників про методичні основи ізоляції МСК з АЖТ. Цілеспрямовано вивчені дані про цитологічних критерії віднесення біологічних субстратів до стовбурових клітин. Критично осмислений досвід фахівців з трансплантації СК, що виділяються з АЖТ, у випадках необхідності виконання пластичних операцій на молочних залозах.

    Ключові слова: мезенхімальні стовбурові клітини, жирова тканина, регенеративна медицина, пластична хірургія, молочні залози

    Breast deformities correction using cellular technologies is a promising direction of medical science. Nevertheless, information on the improvement of mammary glands shape and volume with autologous fat tissue enriched with stem cells (SC) is ambiguous. Different researchers perform such surgeries both in aesthetic and reconstructive cases. The necessity of versatile assessment of different researcher's experience in cases of adipose derived stem cells (ADSC) application in plastic and reconstructive breast surgery prompts a critical study of scientific papers devoted to the use of regenerative medicine technologies in breast surgery cases. Recommendations of the researchers on the methods of ADSC isolation from autologous fat tissue are examined thoroughly. Cytological criteria of biological substrate being qualified as stem cells are studied as well. The experience of many authors in ADSC transplantation in cases of plastic breast surgery is analysed.

    Keywords: mesenchymal stem cells, adipose tissue, regenerative medicine, plastic surgery, mammary gland

    Вступ. Частота випадків проведення мам-мопластікі за косметичними показниками зростає. Однак операції на молочних залозах (МЗ) нерідко здійснюються не тільки з естетичних міркувань. Стійка тенденція до збільшення показників захворюваності жінок на рак молочних залоз (РМЗ) зберігається [1-3]. Хірургічний метод серед технологій комбінованого лікування хворих на РМЗ вважається основним. Як у випадках виконання радикальної мастектомії, так і при секторальних резекціях gl.mammae, після операції, природно, відбувається деформація МЗ, що значно погіршує якість життя жінок, хворих на РМЗ, знижуючи можливості їх якнайшвидшої соціальної адаптації [4].

    Аутологічної жирова тканина (АЖТ) - унікальний пластичний матеріал, що підходить для усунення дефектів м'яких тканин різних анатомічних областей. Відомості про застосування АЖТ як пластичний субстрату для протезування наводяться ще в класичних працях G.Neuber [5] і E.Lexer [6]. Однак лише з відкриттям мезенхімаль-них стовбурових клітин (МСК) з АЖТ людини виявилося можливим розглядати варіанти трансплантації жирової тканини (ЗТ) в зовсім іншому ракурсі, застосовуючи на практиці принципи регенеративної медицини [7-10]. За цитологічним властивостями СК з АЖТ схожі з подібними клітинними елементами, які отримуються з кісткового мозку, а їх застосування в широкій практиці стає реальним через відносну простоту ізоляції. [9, 11].

    У друкованих джерелах наукових спостережень відображені дані про трансплантацію АЖТ, збагаченої СК, для пластичної корекції молочних залоз як по косметичним, так і за медичними показаннями, в тому числі обумовленим необхідністю усунення післяопераційних деформацій. Результати, представлені авторами в науковій літературі, часом суперечливі. Дана обставина обумовлює необхідність цілеспрямованого вивчення досвіду фахівців, які обгрунтовують анатомо-фізіологічні аспекти застосування СК з ЗТ в пластичної та реконструктивної хірургії МЗ.

    Матеріал і методи. Для збору наукової медичної інформації використані бази даних https: //www.ncbi.nlm. тк gov / pubmed, http://www.cochranelibrary.com/. Вивчено відомості, що містяться в 985 джерелах літератури, опублікованих в період з 2008 по 2018 рр., Серед них суто по темі дослідження проаналізовано зміст 47 публікацій.

    Результати, їх обговорення. Торкаючись даних про способи ізоляції МСК з АЖТ, їх цитологічних особливості і можливості застосування СК в якості аутологичного матеріалу для усунення деформацій м'яких тканин, оптимальним напрямком в плані вдосконалення результатів аутоаді-потрансплантаціі багато авторів вважають використання клітинно-зв'язаного ліпотрансфера (КСЛ), предложенногоD. Matsumotoetal. в 2006 р [12] Особливістю цього методу є збагачення трансплантуються жирової тканини МСК. Тому виявлення оптимальних технологій отримання ЗТ з метою виділення культури МСК розглядається дослідниками, як один з перспективних напрямків вивчення аспектів клінічного застосування МСК [13-15]. Ряд авторів повідомляє про успішність збору ЗТ за допомогою вакуумної ліпосакції так званих донорських зон тіла людини [16]. Інші дослідники пропонують отримувати ЗТ для ізоляції культури МСК шляхом ліпоектоміі [17]. Деякі фахівці переконані, що різниця в способі забору ЗТ в цілому не впливає на кількісні параметри СК, що виділяються з неї [18]. Однак в наукових публікаціях міститься інформація про те, що рівні експресії генів і здатності СК з ЗТ до певної диференціації багато в чому визначаються методом отримання тканинного матеріалу при ліпосакції / ліпоектоміі [15].

    Після заготівлі АЖТ здійснюється ізоляція з неї культури СК. Найбільш поширеним способом виділення СК з ЗТ вважається ферментативне розщеплення ліпоаспірата (ЛА) на клітини стромаль-ної судинної фракції (ССФ), що містить стовбурові, стромальні і ендотеліальні клітинні елементи, перицитів, лейкоцити, еритроцити і ряд неклітинних побічних продуктів [19]. В процесі фермен-вання ЗТ застосовуються діспаза, трипсин, але найчастіше - коллагеназа. Після промивання ЛА стерильним розчином фосфатного буфера до золотистого кольору, отриманий субстрат обробляється розчином колагенази в фосфатному буфері, потім суміш витримується в термостаті при температурі 37 ° С, після чого її нижній шар, переміщається в пробірки і центрифугируется. Випадає осад складають клітини ССФ, які ресуспендіруют в контрольних середовищах, перераховуються і поміщаються в окремі колби з концентрацією в межах 1 * 106 клітин. В цілому, з 20 мг ліпоаспірата виходить більш 1х107клеток ССФ [14].

    Неферментативні способи ізоляції СКЖТ з ЛА базуються на тому, що після ЛЗ стовбурові клітини розташовуються на дні аспіраційної ємності.

    Клітини, виділені неферментативним способом, фенотипічно і по здатності до диференціювання не відрізняються від аналогічних, одержуваних при ферментований ЛА, але їх кількість в результаті виявляється в 19-20 разів меншим [14, 20, 21].

    У 2006 році міжнародним суспільством клітинної терапії (МОКТ) сформульовано ряд цитологічних критеріїв, необхідних для ідентифікації СКЖТ [22]. Він включає: пластичну адгезив-ність в стандартних умовах культивування; експресію CD73, CD90 і CD105; відсутність експресії CD45, CD34, CD14 або CD11b, CD19 або CD79a і HLA-DR поверхневих молекул [22]. У 2013 році фахівцями МОКТ позначені додаткові позитивні маркери (CD13, CD29 і CD44), які виявляються на поверхні СКЖТ більш, ніж в 80% випадків, а CD31, CD45, і CD235а розцінені, як основні негативні маркери, т.к виявляються на поверхні СКЖТ менше ніж в 2% спостережень [19]. Для фенотипування клітин в якості мезен-хімальних мультіпотентних на поверхні СК має бути, щонайменше, два позитивних і два негативних маркера, а життєздатність клітинних елементів повинна перевищувати 70%. До того ж, виділені СК обов'язково повинні диференціюватися в остеобласти, адипоцити і хондробла-сти [23].

    Таким чином, на думку фахівців, основними особливостями СКЖТ, є відносна простота їх отримання при мінімальній хірургічної травматизації донорської області організму пацієнта і можливість диференціювання, аналогічна іншим видам МСК [7, 11]. Важливо, що СКЖТ характеризуються більш вираженими можливостями проліферації і культивування в порівнянні з СК кісткового мозку [24-26]. Здатність СКЖТ диференціюватися не лише в адіпо-ціти, але і в остеобласти, хондроцити, міоцити, епітеліальні клітини і нейрони дозволяє вважати про потенційну можливість їх використання для відтворення багатьох тканин людського організму

    [7].

    Накопичення наукових даних про унікальну здатність СК з ЗТ до регенерації, секреції трофічних факторів і диференціювання в різні типи клітин індукує розробку нових технологій лікування пацієнтів з використанням клітинної терапії. В даний час в публікаціях багатьох авторів повідомляється про позитивні результати трансплантації аутологічних МСК для корекції дефектів тканин тіла людини [27-30]. Зокрема, регенеративний потенціал СКЖТ наочно демонструється в випадках трансплантації АЖТ для усунення дефектів м'яких тканин. Використовувана для пластики аутологичная тканину, крім безлічі клітин, містить в тому числі і СК, що сприяють неоангіогенез в ін'єктувати ЗТ за допомогою секреції ангіогенних факторів росту [11, 31, 32].

    Вивчення даних авторів про результати застосування МСК з АЖТ в пластичної та реконструктивної хірургії молочних залоз показує, що корекція вроджених деформацій МЗ, последст-

    вий хірургічного лікування пацієнток з РМЗ, а також виконання маммопластики з естетичних показаннями - найбільш часті операції, що виконуються пластичними хірургами. У цих випадках поряд з ендопротезування молочних залоз, широко застосовується вільна аутоадіпотрансплантація - липофилинг (ЛФ) [33].

    Введення жирових аутотрансплантатов для усунення деформацій МЗ спочатку нерідко супроводжувалося парціальним некрозом пересаджувати ЗТ, формуванням кальцинатів і жирових кіст, що істотно ускладнювало інтерпретацію результатів променевих методів дослідження при скринінгу РМЗ [34, 35]. Дослідники розглядали багато способів поліпшення виживаності трансплантованою жирової тканини. Однак в якості ефективного способу вирішення даного завдання пріоритет віддається клітинно-зв'язаного ліпотранс-Феру (КСЛ), вперше здійсненому в експерименті на тварин D.Matsumoto et al в 2006 році [12]. Ці автори запропонували застосовувати для збільшення обсягу м'яких тканин АЖТ, насичену СК. При такому підході значно підвищується виживаність пересаджених адипоцитів, зменшується ступінь резорбції трансплантата, знижується частота формування фіброзаокружающіх тканин і утворення жирових кіст [12].

    Збільшення обсягу і корекцію форми МЗ із застосуванням КСЛ ряд авторів здійснює суто з естетичних показаннями [36, 37]. Зокрема, K.Yoshimura et al [37] наводять дані про позитивний досвід застосування КСЛ в 40 випадках збільшення обсягу МЗ. На комплікації при цих хірургічних втручаннях автори вказують лише в одному клінічному спостереженні, когдапосредством планової магнітно-резонансної томографії (МРТ) після операції виявлено ектопічне (парастернального) формування фіброзної тканини. Вивчення віддалених результатів операції через 2 роки за даними МРТ та мамографії дозволило об'єктивно констатувати факт збільшення обсягу молочних залоз від 100 до 200 мл без будь-яких патологічних змін в зоні проведеного хірургічного втручання [37].

    T.Kamakura, K.Ito, 2011 [36] з естетичних показаннями застосовували КСЛ з метою збільшення обсягу молочних залоз у 20 здорових пацієнток. Компоненти ССФ з ЛА автори отримували, використовуючи апарат Celution 800 System (США). Позитивні результати операції відзначені в 69% спостережень у пацієнток, дані про яких включені в дослідження. За даними МРТ, виконаної в післяопераційному періоді, в 2 (10%) випадках сформувалися жирові мікроцисти, які в подальшому каль-ціфіціровалісь. Інших негативних наслідків застосування КСЛ не було [36].

    H.H.Peltoniemi et al [38], грунтуючись на даних проспективного дослідження, присвяченого оцінці ефективності використання КСЛ в порівнянні з ліпофілінга (ЛФ) з метою естетичного збільшення обсягу молочних залоз прийшли до висновку про те, що виконання КСЛ не має переваж-

    речовин в порівнянні з традиційним ЛФ за умови застосування водоструминної ліпосакції для збору ЗТ. Але відмінності, виявлені авторами, не можуть бути віднесені до статистично значущим. У групі з 18 жінок, відомості про яких включені в дослідження, в післяопераційному періоді ступінь резорбції аутоадіпотрансплантата контролювалася авторами за даними МРТ. Вона виявилася порівнянної в групах дослідження і контролю. Таким чином констатовано, що використання трансплантації аутологічної ЗТ для збільшення обсягу МЗ за естетичними показниками без збагачення аутоаді-потрансплантата СК дозволяє не тільки скоротити час виконання операції, а й знизити ризик мікробної контамінації трансплантованого субстрату зі зменшенням загальних фінансових витрат при порівнянних клінічних результатах хірургічного лікування [ 38].

    Деякі автори продовжують дослідження можливостей різних варіантів клітинної терапії, при яких пацієнтам для відновлення дефектів м'яких тканин попередньо здійснюється класичний липофилинг, а потім в зону пластичної корекції цілеспрямовано ін'еціруются СК, виділені з ЗТ. Подібна методика визначається як етапний клітинно-зв'язаний ліпотрансфер - Ексл [30].

    T.Tiryaki et al [30], аналізуючи результати застосування Ексла в 29 наблюденіяхустраненія дефектів м'яких тканин людини разногогенеза і анатомічної локалізації, не виявили ускладнень хірургічного втручання в післяопераційному періоді. У той же час автори звертають увагу на істотне зниження ступеня резорбції Ауто-діпотрансплантата в порівнянні з традиційним ліпофілінга.

    Застосування СК, за даними M.Zhu et al [39], сприяє поліпшенню реконструктивних властивостей трансплантуються ЗТ, значно знижуючи рівень її розробці у віддаленому періоді спостереження за пацієнтами.

    З метою оцінки клінічної ефективності клітинно-зв'язаного ліпотрансфера S.F.Kolle et al [28] зробили потрійне сліпе рандомізоване контрольоване дослідження. В ході нього 13 учасникам в попередньо визначені ділянки тіла під шкіру вводилися аутоадіпотрансплантати однакового обсягу (збагачені і незбагачені СК з ЗТ). Порівнюючи результати операцій, констатовано істотне зниження ступеня резорбції жирових клітин в випадках виконання КСЛ в порівнянні з традиційними методиками трансплантації ЗТ [28].

    Фахівці в галузі клітинної терапії пов'язують особливі надії з можливістю застосування КСЛ при усуненні деформацій МЗ пацієнткам, оперованих з приводу РМЗ. Усунення деформацій МЗ у пацієнток, які перенесли хірургічне лікування з приводу ЗНО gl. mammae - одна з актуальних проблем сучасної онкології, оскільки такий підхід дозволяє прискорити темпи соціальної реабілітації та підвищити якість життя

    жінок. Однак ряд дослідників констатує, що використання МСК може підвищувати ризик мета-стазірованія пухлинних клітин при РМЗ, після виконання КСЛ [40, 41]. Не виключається також, що введення СК з ЗТ для усунення дефектів МЗ пацієнткам, які перенесли хірургічне лікування РМЗ, може сприяти розвитку локального рецидиву ЗНО, створюючи в зоні їх введення в м'які тканини своєрідну середу, в якій пухлинний процес може поновитися в умовах неоангіо-генезу [ 42, 43].

    У той же час інші автори вважають, що КСЛ - ефективне і безпечне хірургічне втручання, а його виконання оптимально у випадках усунення деформацій МЗ, обумовлених квадрантектоміей glandulaemammae з приводу раку, і не збільшує ймовірність рецидиву РМЗ після операції [44]. При відсутності рецидиву пухлини в віддаленому періоді спостереження заповнення дефектів МЗ пацієнткам, які зазнали операцій з приводу РМЗ, можна здійснювати за допомогою ЛФ переднебокових відділів грудної стінки [45].

    Корекція деформацій МЗ у пацієнток, які перенесли хірургічне лікування з приводу ЗНО gl. mammae - одна з непростих завдань сучасної онкології та пластичної хірургії на увазі необхідність досягнення якнайшвидшої соціальної реабілітації та оптимальної якості життя. Онкологи-мамологи в 2012 році здійснили проспективне мультицентровое дослідження «Restore-2», в ході якого оцінена ефективність обстеження і лікування 71 пацієнтки, що зазнала операції з приводу РМЗ. Після даних хірургічних втручань у всіх спостереженнях у хворих відбулася деформація МЗ [44]. Автори проаналізували реконструктивні та естетичні можливості КСЛ у випадках корекції післяопераційних деформацій МЗ через 12 і більше місяців після первинної онкологічної операції. У більшості (63,4%) клінічних спостережень пацієнтки оцінювали результати проведеної хірургічної корекції об'єму молочних залоз по 6-бальною шкалою з задоволеністю в інтервалі від 4 до 6 балів. Терміни спостереження за жінками, які перенесли операції по корекції форми МЗ із застосуванням КСЛ, перевищували 12 місяців. Автори констатували, що КСЛ - ефективне і безпечне хірургічне втручання у випадках необхідності усунення дефектів МЗ, що утворилися після їх резекції з приводу раку [46].

    Y.Zhou et al [47] повідомляють, що використання КСЛ у випадках реконструкції тканин в зонах МЗ після хірургічного лікування з приводу ЗНО в плані приживлюваності адіпотрансплантатов виявляється ефективним не більше ніж на 9%, що не може вважатися клінічно значущим. У той же час ці автори вважають, що виконання даного втручання пов'язане з підвищеним ризиком розвитку ускладнень, у порівнянні з іншими операціями.

    Очевидно, що застосування клітинних технологій в клінічній практиці має бути індивідуально орієнтоване з урахуванням структури цітоло-

    ня популяцій і синтезованих ними трофічних факторів. У регенеративної медицини перспективним напрямком досліджень для пластичних хірургів виявляється модернізація способів виділення культури МСК, яку можна було б використовувати при КСЛ як інтраопераційно (у міру завершення їх ізоляції), так і отсроченно, підібравши СК з банку.

    Висновок. Вивчення результатів досліджень багатьох дослідників дозволяє вважати, що, незважаючи на проведення цілеспрямованих наукових робіт, отримати аргументовані відповіді на всі питання, що стосуються застосування в клінічній практиці мультіпотентних СК з ЗТ, поки не представляється можливим. Єдиної думки про технології вивчення фенотипической характеристики СК з ЗТ також, як і про універсальний метод їх ізоляції з організму людини, поки немає. Без відповіді також залишаються питання оцінки віддалених результатів проведення клітинно-зв'язаного ліпотрансфера в зонах висічення злоякісних новоутворень МЗ. Механізми впливу стовбурових клітин на організм (паракрінний або внаслідок диференціювання ровки в клітини оточуючих тканин) вивчені не повною мірою. Тільки чітке розуміння глибини спірних проблем сучасного лікування хворих на РМЗ із застосуванням клітинних технологій дозволить чіткіше формулювати завдання майбутніх наукових досліджень в плані оцінки результатів використання даних методик в хірургічній (онкологічної) практиці, в тому числі в ракурсі пластичного і реконструктивного компонента діяльності фахівців. З подоланням проблем становлення клітинної терапії, ймовірно, виявиться можливим досягнення нових горизонтів в регенеративної медицини.

    1. Ginsburg O. et al. The global burden of women's cancers: a grand challenge in global health. Lancet 2017, vol. 389, no. 10071, pp. 847-860. doi: 10.1016 / s0140-6736 (16) 31392-7.

    2. Icaza G., Niinez L., Bugueno H. Epidemiological analysis of breast cancer mortality in women in Chile. RevMedChil 2017, vol. 145, no. 1, pp. 106-114. doi: 10.4067 / s0034-98872017000100014.

    3. Хижа Вал.Вас., Мовчан К.М., Попов С.В., Скрябін О.Н., Гриненко О.А., Русакевич К.І., Хижа Віт.Вал. Статистичні дані про випадки злоякісних новоутворень в Санкт-Петербурзі в 2011-2015 роках // Вісник СПбГУ. Медицина, 2017. Т. 12. № 1. С.60-82. doi: 10.21638 / 11701 / spbu11.2017.106 (Khizha Val.Vas., Movchan KN, Popov SV, Skryabin ON, Grinеnko OA, Rusakevich KI, Khizha Vit.Val. Statisticheskie dannye o sluchayakh zlokachestvennykh novoobrazovanij v Sankt-Peterburge v 2011-2015 godakh [The statistical datа of cancer cases in Saint Petersburg within 2011-2015]. Vestnik SPbSU, Medicine 2017, vol. 12, no. 1, pp. 60-81. (In Russ.)).

    4. Lee J.W., Kim M.C., Park H.Y., Yang J.D. Oncoplastic volume replacement techniques according to the excised volume and tumor location in small- to moderate-sized breasts. Gland Surg, 2014 року, vol. 3, no 1, pp. 14-21. doi: 10.3978 / j.issn.2227-684X.2014.02.02.

    5. Neuber G. Fettransplantation. Verhandlungen der deutschen Gesellschaft fur Chirurgie. Zentralbl. Chir., 1893, vol. 22, p. 66.

    6. Lexer E. Freie Fetttransplantation. Deutsch Med. Wochenschr., 1910, vol. 36, p. 640.

    7. Brayfield C., Marra K., Rubin J.P. Adipose stem cells for soft

    tissue regeneration. Handchir. Mikrochir. Plast. Chir. 2010, vol. 42, no. 2, pp. 124-128. doi: 10.1055 / s-0030-1248269.

    8. Ebrahimian T.G. et al. Cell therapy based on adipose tissue-derived stromal cells promotes physiological and pathological wound healing. Arterioscler. Thromb. Vasc. Biol., 2009 vol. 29, no. 4, pp. 503-510. doi: 10.1161 / atvbaha.108.178962.

    9. Koh K.S. et al. Clinical application of human adipose tissue-derived mesenchymal stem cells in progressive hemifacial atrophy (Parry-Romberg disease) with microfat grafting techniques using 3-dimensional computed tomography and 3-dimensional camera. Ann. Plast. Surg., 2012 vol. 69, no. 3, pp. 331-337. doi: 10.1097 / sap.0b013e31826239f0.

    10. Rigotti G. et al. Clinical treatment of radiotherapy tissue damage by lipoaspirate transplant: a healing process mediated by adipose-derived adult stem cells. Plast. Reconstr. Surg., 2007, vol. 119, no. 5, pp. 1409-1422; discussion 1423-4. doi: 10.1097 / 01.prs.0000256047.47909.71.

    11. Brown S.A. et al. Basic science review on adipose tissue for clinicians. Plast. Reconstr. Surg., 2010 vol. 126, no. 6, pp. 1936-1946. doi: 10.1097 / PRS.0b013e3181f44790.

    12. Matsumoto D. et al. Cell-assisted lipotransfer: supportive use of human adipose-derived cells for soft tissue augmentation with lipoinjection. Tissue Eng., 2006, vol. 12, no. 12, pp. 3375-3382. doi: 10.1089 / ten.2006.12.3375.

    13. Buschmann J. et al. Yield and proliferation rate of adipose-derived stromal cells as a function of age, body mass index and harvest site-increasing the yield by use of adherent and supernatant fractions? Cytotherapy, 2013, vol. 15, no. 9, pp. 1098-1105. doi: 10.1016 / j.jcyt.2013.04.009.

    14. Francis M.P., Sachs P.C., Elmore L.W., Holt S.E. Isolating adipose-derived mesenchymal stem cells from lipoaspirate, blood and saline fraction. Organogenesis 2010, vol. 6, no 1, pp. 11-14. doi: 10.4161 / org.6.1.10019.

    15. Gnanasegaran N., Govindasamy V., Musa S., Kasim N.H. Different isolation methods alter the gene expression profiling of adipose derived stem cells. Int. J. Med. Sci, 2014 року, vol. 11, no. 4, pp. 391-403. doi: 10.7150 / ijms.7697.

    16. Torio-Padron N., Huotari A.M., Eisenhardt S.U., Borges J., Stark G.B. Comparison of Pre-Adipocyte Yield, Growth and Differentiation Characteristics from Excised versus Aspirated Adipose Tissue. Cells Tissues Organs 2010, vol. 191, no 5, pp. 365-371. doi: 10.1159 / 000276594.

    17. Oedayrajsingh-Varma M.J. et al. Adipose tissue-derived mesenchymal stem cell yield and growth characteristics are affected by the tissue-harvesting procedure. Cytotherapy, 2006, vol. 8, no. 2, pp. 166-177. doi: 10.1080 / 14653240600621125.

    18. Schreml S. et al. Harvesting human adipose tissue-derived adult stem cells: resection versus liposuction. Cytotherapy 2009, vol. 11, no. 7, pp. 947-957. doi: 10.3109 / 14653240903204322.

    19. Bourin P. et al. Stromal cells from the adipose tissue-derived stromal vascular fraction and culture expanded adipose tissue-derived stromal / stem cells: a joint statement of the International Federation for Adipose Therapeutics and Science (IFATS) and the International Society for Cellular Therapy (ISCT). Cytotherapy, 2013, vol. 15, no. 6, pp. 641648. doi: 10.1016 / j.jcyt.2013.02.006.

    20. Yoshimura K. et al. Characterization of freshly isolated and cultured cells derived from the fatty and fluid portions of liposuction aspirates. J. Cell Physiol., 2006, vol. 208, no. 1, pp. 64-76. doi: 10.1002 / jcp.20636.

    21. Zeng G. et al. A rapid and efficient method for primary culture of human adipose-derived stem cells. Organogenesis, 2013, vol. 9, no. 4, pp. 287-295. doi: 10.4161 / org.27153.

    22. Dominici M. et al. Minimal criteria for defining multipotent mesenchymal stromal cells. The International Society for Cellular Therapy position statement. Cytotherapy, 2006, vol. 8, no. 4, pp. 315-317. doi: 10.1080 / 14653240600855905.

    23. Sensebe L., Bourin P., Tarte K. Good manufacturing practices production of mesenchymal stem / stromal cells. Hum. Gene. Ther., 2011, vol. 22, no. 1, pp. 19-26. doi: 10.1089 / hum.2010.197.

    24. Gimble J.M., Guilak F., Bunnell B.A. Clinical and preclinical translation of cell-based therapies using adipose tissue-derived cells. Stem Cell Res. Ther. 2010, vol. 1, no. 2, p. 19. doi: 10.1186 / scrt19.

    25. Higuchi A. et al. Differentiation ability of adipose-derived stem cells separated from adipose tissue by a membrane filtration method. J. Membr. Sci, 2011, vol. 366, no. 2, pp. 286-294. doi: 10.1016 / j.memsci.2010.10.009.

    26. Strem B.M. et al. Multipotential differentiation of adipose tissue-derived stem cells. Keio J Med., 2005, vol. 54, no. 3, pp. 132-141. doi: 10.2302 / kjm.54.132.

    27. Thesleff T. et al. Cranioplasty with adipose-derived stem cells and biomaterial: a novel method for cranial reconstruction. Neurosurgery, 2011, vol. 68, no. 6, pp. 15351540. doi: 10.1227 / neu.0b013e31820ee24e.

    28. Kolle S.F et al. Enrichment of autologous fat grafts with exvivo expanded adipose tissue-derived stem cells for graft survival: a randomised placebo-controlled trial. Lancet, 2013, vol. 382, no. 9898, pp. 1113-1120. doi: 10.1016 / s0140-6736 (13) 61410-5.

    29. Pinheiro C.H. et al. Local injections of adipose-derived mesenchymal stem cells modulate inflammation and increase angiogenesis ameliorating the dystrophic phenotype in dystrophin-deficient skeletal muscle. Stem Cell Rev. 2012, vol. 8, no. 2, pp. 363-374. doi: 10.1007 / s12015-011-9304-0.

    30. Tiryaki T., Findikli N., Tiryaki D. Staged stem cell-enriched tissue (SET) injections for soft tissue augmentation in hostile recipient areas: a preliminary report. Aesthetic Plast. Surg, 2011, vol. 35, no. 6, pp. 965-971. doi: 10.1007 / s00266-011-9716-x.

    31. Salgado A.J., Reis R.L., Sousa N.J., Gimble J.M. Adipose tissue derived stem cells secretome: soluble factors and their roles in regenerative medicine. Curr. Stem Cell Res. Ther. 2010, vol. 5, no. 2, pp. 103-110. doi: 10.2174 / 157488810791268564.

    32. Sheng L., Yang M., Li H., Du Z., Yang Y., Li Q. Transplantation of adipose stromal cells promotes neovascularization of random skin flaps. Tohoku J. Exp. Med, 2011, vol. 224, no. 3, pp. 229-234. doi: 10.1620 / tjem.224.229.

    33. Kasem A., Wazir U., Headon H., Mokbel K. Breast Lipofilling: A Review of Current Practice. Arch Plast Surg, 2015-го, vol. 42, no. 2, pp. 126-130. doi: 10.5999 / aps.2015.42.2.126.

    34. Zheng D.N. et al. Autologous fat grafting to the breast for cosmetic enhancement: experience in 66 patients with long-term follow up. J. Plast. Reconstr. Aesthet. Surg, 2008, vol. 61, no. 7, pp. 792-798. doi: 10.1016 / j.bjps.2007.08.036.

    35. Coleman S.R., Saboeiro A.P. Fat grafting to the breast revisited: safety and efficacy. Plast. Reconstr. Surg., 2007, vol. 119, no. 3, pp. 775-785; discussion 786-7. doi: 10.1097 / 01.prs.0000252001.59162.c9.

    36. Kamakura T., Ito K. Autologous cell-enriched fat grafting for breast augmentation. Aesthetic Plast Surg, 2011, vol. 35, no.

    6, pp. 1022-1030. doi: 10.1007 / s00266-011-9727-7.

    37. Yoshimura K. et al. Cell-assisted lipotransfer for cosmetic breast augmentation: supportive use of adipose-derived stem / stromal cells. Aesthetic Plast Surg, 2008, vol. 32, no. 1, pp. 48-55; discussion 56-57. doi: 10.1007 / s00266-007-9019-4.

    38. Peltoniemi H.H. et al. Stem cell enrichment does not warrant a higher graft survival in lipofilling of the breast: A prospective comparative study. J. Plast. Reconstr. Aesthet. Surg., 2013, vol. 66, no. 11, pp. 1494-1503. doi: 10.1016 / j.bjps.2013.06.002.

    39. Zhu M. et al. Supplementation of fat grafts with adipose-derived regenerative cells improves long-term graft retention. Ann Plast Surg., 2010 vol. 64, no. 2, pp. 222-228. doi: 10.1097 / sap.0b013e31819ae0 5 c.

    40. Karnoub A.E. et al. Mesenchymal stem cells within tumour stroma promote breast cancer metastasis. Nature, 2007, vol. 449, no. 7162, pp. 557-563. doi: 10.1038 / nature06188.

    41. Rowan B.G. et al. Human adipose tissue-derived stromal / stem cells promote migration and early metastasis of triple negative breast cancer xenografts. PLoS One, 2014 року, vol. 9, no. 2, pp. 89595. doi: 10.1371 / journal.pone.0089595.

    42. Eterno V. et al. Adipose-derived Mesenchymal Stem Cells (ASCs) may favour breast cancer recurrence via HGF / c-Met signaling. Oncotarget, 2014 року, vol. 5, no. 3, pp. 613-633. doi: 10.18632 / oncotarget. тисяча триста п'ятьдесят дев'ять.

    43. Zimmerlin L. et al. Regenerative therapy and cancer: in vitro and in vivo studies of the interaction between adipose-derived stem cells and breast cancer cells from clinical isolates. Tissue Eng. Part A, 2011, vol. 17, no. 1-2, pp. 93106. doi: 10.1089 / ten.tea.2010.0248.

    44. Perez-Cano R. et al. Prospective trial of Adipose-Derived Regenerative Cell (ADRC) -enriched fatgrafting for partial mastectomy defects: The RESTORE-2 trial. Eur. J. Surg. Oncol 2012, vol. 38, no. 5, pp. 382-389. doi: 10.1016 / j.ejso.2012.02.178.

    45. Hamza A., Lohsiriwat V., Rietjens M. Lipofilling in breast cancer surgery. Gland Surg, 2013, vol. 2, no. 1, pp. 7-14. doi: 10.3978 / j.issn.2227-684X.2013.02.03.

    46. ​​Lampert F.M., Grabin S., Bjorn Stark G. The RESTORE-2 trial: proof of safety and efficacy of "regenerative-cell enriched"; fat-grafting? Eur. J. Surg. Oncol 2012, vol. 38, no. 12, pp. 1231-1232; author reply 1233-4. doi: 10.1016 / j.ejso.2012.08.014.

    47. Zhou Y., Wang J., Li H., Liang X., Bae J., Huang X., Li Q. Efficacy and Safety of Cell-Assisted Lipotransfer: A Systematic Review and Meta-Analysis. Plast Reconstr. Surg, 2016, vol. 137, no. 1, pp. 44-57. doi: 10.1097 / prs.0000000000001981.


    Ключові слова: МЕЗЕНХІМАЛЬНИХ стовбурові клітини /MESENCHYMAL STEM CELLS /ЖИРОВА ТКАНИНА /ADIPOSE TISSUE /РЕГЕНЕРАТИВНА МЕДИЦИНА /REGENERATIVE MEDICINE /ПЛАСТИЧНА ХІРУРГІЯ /PLASTIC SURGERY /МОЛОЧНІ ЗАЛОЗИ /MAMMARY GLAND

    Завантажити оригінал статті:

    Завантажити