Для трьох видів лишайників Evernia prunastri, Ramalina pollinaria і Cladonia arbuscula оцінювали ефективність вилучення ацетоном, етанолом та бензолом усніновой кислоти з біомаси методами холодної мацерації біомаси відповідним розчинником і екстракції в апараті Сокслета безпосередньо і з попередньої холодної мацерацією біомаси гексаном. ефективність вилучення усніновой кислоти з біомаси Evernia prunastri і Ramalina pollinaria була найбільшою в разі використання методу холодної мацерації гексаном протягом 7 діб з подальшою екстракцією етанолом в апараті Сокслета до 0,43% і 1,81% повітряно-сухої маси лишайника, відповідно. З біомаси Cladonia arbuscula найефективніше усніновая кислота витягалася методом холодної мацерації ацетоном до 2,54% повітряно-сухої маси лишайника.

Анотація наукової статті по промисловим біотехнологій, автор наукової роботи - Храмченкова Ольга Михайлівна, Новіков Роман Ігорович


Extraction efficiency analysis of usnic acid from lichens of Belarusian Polesie

The extraction efficiency of usnic acid by acetone, ethanol and benzene from lichens Evernia prunastri, Ramalina pollinaria and Cladonia arbuscula was investigated. The methods of cold maceration of biomass with the appropriate solvent and extraction in the Soxhlet extractor directly and with preliminary cold maceration of the biomass with hexane were used. The extraction efficiency of usnic acid from the biomass Evernia prunastri and Ramalina pollinaria was greatest when using the method of cold maceration with hexane for 7 days, followed by extraction with ethanol in the Soxhlet extractor up to 0.43% and 1.81% of the air-dry mass of the lichen, respectively. From Cladonia arbuscula biomass, usnic acid was most efficiently recovered by the method of cold maceration with acetone up to 2.54% of the air-dry mass of the lichen.


Область наук:
  • промислові біотехнології
  • Рік видавництва: 2018
    Журнал
    Бюлетень науки і практики
    Наукова стаття на тему 'АНАЛІЗ ЕФЕКТИВНОСТІ ВИЛУЧЕННЯ усніновая КИСЛОТИ з лишайників Білоруського ПОЛІССЯ'

    Текст наукової роботи на тему «АНАЛІЗ ЕФЕКТИВНОСТІ ВИЛУЧЕННЯ усніновая КИСЛОТИ з лишайників Білоруського ПОЛІССЯ»

    ?БІОЛОГІЧНІ НА УКІ / BIOLOGICAL SCIENCES

    УДК 547.728.23: 582.29 (476.2) AGRIS: F60

    АНАЛІЗ ЕФЕКТИВНОСТІ ВИЛУЧЕННЯ усніновая КИСЛОТИ з лишайників Білоруського ПОЛІССЯ

    © Храмченкова О. М., канд. біол. наук, Гомельський державний університет ім. Франциска Скорини, м Гомель, Республіка Білорусь, Ця електронна адреса захищена від спам-ботів. Вам потрібно увімкнути JavaScript, щоб побачити її. © Новіков Р. І., Інститут радіобіології Національної академії наук Білорусі, м Гомель, Республіка Білорусь, Ця електронна адреса захищена від спам-ботів. Вам потрібно увімкнути JavaScript, щоб побачити її.

    EXTRACTION EFFICIENCY ANALYSIS OF USNIC ACID FROM LICHENS

    OF BELARUSIAN POLESIE

    © Khramchankova V., Ph.D., Francisk Skorina Gomel State University, Gomel, Republic of Belarus, hramchenkova @ gsu. by © Novikau R., Institute of radiobiology of the National Academy of Sciences of Belarus, Gomel, Republic of Belarus, Ця електронна адреса захищена від спам-ботів. Вам потрібно увімкнути JavaScript, щоб побачити її.

    Анотація. Для трьох видів лишайників - Evernia prunastri, Ramalina pollinaria і Cladonia arbuscula оцінювали ефективність вилучення ацетоном, етанолом та бензолом усніновой кислоти з біомаси методами холодної мацерації біомаси відповідним розчинником і екстракції в апараті Сокслета - безпосередньо і з попередньої холодної мацерацією біомаси гексаном.

    Ефективність вилучення усніновой кислоти з біомаси Evernia prunastri і Ramalina pollinaria була найбільшою в разі використання методу холодної мацерації гексаном протягом 7 діб з наступною екстракцією етанолом в апараті Сокслета - до 0,43% і 1,81% повітряно-сухої маси лишайника, відповідно. З біомаси Cladonia arbuscula найбільш ефективно усніновая кислота витягалася методом холодної мацерації ацетоном - до 2,54% повітряно-сухої маси лишайника.

    Abstract. The extraction efficiency of usnic acid by acetone, ethanol and benzene from lichens Evernia prunastri, Ramalina pollinaria and Cladonia arbuscula was investigated. The methods of cold maceration of biomass with the appropriate solvent and extraction in the Soxhlet extractor - directly and with preliminary cold maceration of the biomass with hexane were used.

    The extraction efficiency of usnic acid from the biomass Evernia prunastri and Ramalina pollinaria was greatest when using the method of cold maceration with hexane for 7 days, followed by extraction with ethanol in the Soxhlet extractor - up to 0.43% and 1.81% of the air- dry mass of the lichen, respectively. From Cladonia arbuscula biomass, usnic acid was most efficiently recovered by the method of cold maceration with acetone - up to 2.54% of the air-dry mass of the lichen.

    Ключові слова: лишайники, вторинні метаболіти, усніновая кислота, екстракція, методи, хімічний вихід, ВЕРХ, концентрація усніновой кислоти.

    Keywords: lichens, secondary metabolites, usnic acid, extraction, methods, chemical yield, HPLC, usnic acid concentration.

    Усніновая кислота - жовта кристалічна речовина, похідне дібензофурани - один з найбільш відомих і вивчених вторинних метаболітів лишайників. Назва дана по найменуванню роду уснея - одного з найбільш типових продуцентів усніновой кислоти. Вперше усніновую кислоту виділив в 1844 році Вільгельм Кноп з лишайників пологів Usnea і Ramalina. На початку XX століття була встановлена ​​структура молекули, в 1933-1937 рр. A. Robertson і F. H. Curd вперше синтезували усніновую кислоту [1-2]. В даний час присутність усніновой кислоти встановлено в талломах безлічі пологів лишайників, в тому числі - Alectoria, Cladonia, Evernia, Flavoparmelia, Hypogymnia, Lecanora, Lepraria, Parmeliopsis, Vulpicida і ін. [3].

    Усніновая кислота, як і інші вторинні метаболіти лишайників, продукується гіфами мікобіонта, і відкладається на поверхні їх оболонок [4]. Для більшості згаданих вище пологів лишайників усніновая кислота є кортикальним метаболітом - її присутність виявляється в корів шарі слані [3]. Вважається, що усніновая кислота виконує фотозахисних функцію - поглинає ближній ультрафіолет, що згубно діє на фотосинтетичний апарат фотобіонта [4-5]. Зміст усніновой кислоти в талломах різних видів лишайників в перерахунку на суху масу коливається від часток відсотка до декількох відсотків, відчуваючи при цьому сезонні коливання [6].

    У природі усніновая кислота існує у вигляді двох енантіомерів - оптично активних стереоізомерів. Стандартним лишайником для (+) - усніновой кислоти є Evernia prunastri (L.) Ach .; для (-) - усніновой кислоти - Cladonia stellaris (Ach.) Pouzar et Vezda [1]. Усніновая кислота не розчиняється у воді, слабо розчиняється в етанолі, діетиловому і петролейном ефірах, добре розчиняється в бензолі, хлороформі і аміловий спирті [7-8].

    Під час вилучення вторинних метаболітів з біомаси лишайників використовують органічні розчинники - ацетон, етанол, бензол, метанол, хлороформ, гексан, етилацетат і багато інших. Проблема полягає в тому, що в слоевище лишайника, як правило, міститься набір вторинних метаболітів, один, або кілька з яких присутні в найбільшій кількості, решта - в істотно меншому. Як приклад можна привести роботу [9], присвячену складу вторинних метаболітів Hypogymnia physodes. Використовуваний при екстракції розчинник витягує тільки розчинні в ньому вторинні метаболіти, а також, принагідно, всі інші речовини. Склади екстрактів, отриманих з одного і того ж виду лишайників, але з використанням різних органічних розчинників, відрізняються. Відповідно, відрізняються і величини виходу екстрактів.

    Метою цього дослідження була оцінка ефективності вилучення усніновой кислоти ацетоном, етанолом та бензолом з лишайників Evernia prunastri (L.) Ach., Ramalina pollinaria (Westr.) Ach. і Cladonia arbuscula (Wallr.) Flot. при різних режимах екстракції.

    методи досліджень

    Вибір об'єктів дослідження був пов'язаний з їх поширеністю на південному сході Білорусі [10, 11], наявністю описів складу вторинних метаболітів в слоевищ [12-17].

    Біомасу лишайників відбирали на території Державного лісогосподарського установи «Гомельський лісгосп» на типових для кожного виду субстратах. слоєвіща

    епіфітних видів (Evernia prunastri і Ramalina pollinaria) відбирали разом з фрагментом субстрату (кірки берези повислої і дуба черешчатого, відповідно); епігейний вид Cladonia arbuscula збирали на грунті в сухому середньовікових сосняку. Масу лишайників відокремлювали від субстрату, у Cladonia arbuscula - відкидали нижню частину подеціев, - близько 5 мм, сушили до повітряно-сухого стану, подрібнювали. У таблиці наведені описи режимів екстракції біомаси лишайників і величини виходу екстрактів - у відсотках від повітряно-сухої маси.

    Екстракти з лишайників (20 мг) розчиняли в 2 мл диметилсульфоксиду (ДМСО), центрифугували (10 хв., 21000 g, 15 ° C). Розчини розводили в 60, 80 і 100 разів в 40% розчині ацетонітрилу в 0,1% водному розчині оцтової кислоти, фільтрували через шприцеві фільтри Econofilters (розмір пір 20 мкм), аналізували методом ВЕРХ на мікроколоночном хроматографе Agilent Technologies +1100 (USA) з подальшою комп'ютерною обробкою результатів дослідження програмою ChemStation.

    Таблиця.

    СПОСОБИ ОТРИМАННЯ ЕКСТРАКТІВ з лишайників

    Вид лишайника Екстрагент Умови екстракції Вихід екстракту

    Evernia prunastri ацетон апарат Сокслета, t = 56 ° С 11,0

    Ramalina pollinaria ацетон 11,3

    Evernia prunastri етанол апарат Сокслета, t = 78,3 ° С 14,7

    Ramalina pollinaria етанол 16,5

    Cladonia arbuscula ацетон холодна мацерація протягом 2,9

    Evernia prunastri ацетон 14 діб, t = 25 ° С 9,6

    Ramalina pollinaria ацетон 12,0

    Cladonia arbuscula бензол 1,3

    Ramalina pollinaria бензол 1,6

    Cladonia arbuscula етанол 2,8

    Evernia prunastri етанол 10,1

    Ramalina pollinaria етанол 7,6

    Evernia prunastri ацетон попередньо: холодна мацерація гексаном 11,6

    Ramalina pollinaria ацетон протягом 7 діб, потім екстракція в апараті Сокслета, t = 56 ° С 14,9

    Evernia prunastri етанол попередньо: холодна мацерація гексаном 14,4

    Ramalina pollinaria етанол протягом 7 діб, потім екстракція в 19,3

    апараті Сокслета, t = 78,3 ° С

    Поділ проводили на звернуто-фазової колонці Zorbax розміром 4,6 х 150 мм, з використанням сорбенту 300SB-C18, зернистістю 3,5 мкм. Елюювали в градієнтному режимі зі збільшенням частки ацетонітрилу від 40% до 90% протягом 20 хвилин при швидкості потоку 1 мл / хв. В якості рухомих фаз (елюент) використовували: А - ацетонітрил, B - 0,1% водний розчин оцтової кислоти. Детектування здійснювали за допомогою сканера з діодним матрицею при довжинах хвиль 230 і 280 нм, обсяг введеного зразка - 10 мкл [18].

    Концентрацію усніновой кислоти в аналізованих зразках визначали по калібрувальної кривої залежності площі піку від концентрації стандарту в діапазоні 0,4 ^ 180 мкг / мл. Час утримування для усніновой кислоти - 12,1 хв.

    Вимірювання були виконані в трьох повторностях. Статистична обробка даних проводилася з використанням програмних продуктів STATISTICA 7.0, GraphPadPrism 5.02, Microsoft Excel.

    Результати та їх обговорення Вибір екстрагенту і режиму екстрагування неоднозначно впливали на повноту вилучення усніновой кислоти з біомаси лишайників. На рисунку 1 представлені результати визначення усніновой кислоти в ацетонових і етанольних екстрактах з Evernia prunastri і Ramalina pollinaria.

    «

    Екстракція в апараті Сокслета

    4

    ? g "

    3 ° ~ US 2 я і а

    3 S 4,2 1 - 4,1

    3,5 і

    0,9

    1_1 | __1

    ацетон Evernia prunastri

    етанол Ramalina pollinaria

    5

    1

    0

    Холодна мацерація протягом 14 діб

    ?

    про §

    «5 К

    про «

    про

    до 5

    про

    D

    їв *

    а

    <а п про про

    4,3 4,4 1 4,5 |

    0,8

    ацетон

    етанол

    I Evemia prunastri в Ramalina pollinaria

    5

    4

    3

    2

    1

    0

    Малюнок 1. Ефективність вилучення усніновой кислоти з біомаси лишайників при різних способах екстракції.

    Зміст усніновой кислоти в ацетонових екстрактах з біомаси Ramalina pollinaria варьировало в межах 4,2 ± 0,21% ^ 4,4 ± 0,07%; в етанольних - 4,1 ± 0,06% ^ 4,5 ± 0,07%, тобто не відрізнялося. У ацетонових екстрактах з Evernia prunastri зміст усніновой кислоти становило від 3,5 ± 0,05% до 4,3 ± 0,12%; в етанольних - близько 0,9 ± 0,06%. У перерахунку на повітряно-суху масу лишайника зміст усніновой кислоти склало: для Ramalina pollinaria - 0,34-0,67%; для Evernia prunastri - 0,08-0,41%.

    Відомий спосіб підвищення хімічного виходу екстрактивних речовин з Evernia prunastri, коли перед екстракцією етанолом проводять вичерпну екстракцію гексаном [19]. На думку авторів патенту, гексан руйнує клітинну структуру, видаляє смолисті і воскоподобние речовини, що відкриває доступ до речовин, дисперговані всередині

    Бюлетень науки і практики / Bulletin of Science and Practice http://www.bulletennauki.com

    Т. 4. №6. 2018

    клітин, подальша екстракція етиловим спиртом виснаженого сировини дозволяє отримати необхідні лишайникові кислоти. Нами була виконана попередня холодна мацерація гексаном біомаси Evernia prunastri і Ramalina pollinaria, після чого вироблено екстрагування ацетоном і етанолом в апараті Сокслета. На рисунку 2 представлені результати визначення усніновой кислоти в ацетонових і етанольних екстрактах.

    Попередня холодна мацерація гексаном протягом 7 діб, потім екстракція в апараті Сокслета

    л н

    про «

    про -

    і

    5 К О

    і про

    я -

    я

    про про

    до *

    а

    <D

    ч о про

    10 8 6 4 2 0

    9,4

    ацетон

    етанол

    I Evernia prunastri a Ramalina pollinaria

    3

    Малюнок 2. Вплив попередньої екстракції гексаном на ефективність вилучення усніновой кислоти з біомаси лишайників.

    У разі використання ацетону в якості екстрагента зміст усніновой кислоти в екстрактах було меншим на 40,0% для Everniaprunastri і на 9,5% для Ramalina pollinaria в порівнянні з наведеними вище значеннями. При використанні етанолу в якості екстрагента зміст усніновой кислоти в екстрактах було вище в 3,3 рази для Evernia prunastri і в 2,3 рази для Ramalina pollinaria. Таким чином, ефективність вилучення усніновой кислоти за способом [19] зростає, якщо після екстракції біомаси лишайника гексаном використовують етанол в якості екстрагента.

    Анатомічна будова досліджуваних видів лишайників істотно відрізняється - Малюнок 3.

    Слоевище Ramalina pollinaria гетеромерного, покрите з обох сторін коровим шаром. Серцевина складається з пухко переплетених гіф, заповнює весь простір, іноді утворює в центрі порожнечі [3, 15]. Лишайник Cladonia arbuscula відрізняється тим, що поверхня його подеціев часто позбавлена ​​корового шару [3, 13]. Отже, характер розміщення і ступінь пов'язаності усніновой кислоти на поверхнях гіф цих видів лишайників може відрізнятися.

    Малюнок 3. Особливості анатомічної будови слоевищ Ramalina pollinaria (а) і подеціев Cladonia arbuscula (б).

    При використанні ацетону, етанолу та бензолу в якості екстрагентів зміст усніновой кислоти в екстрактах з Ramalina pollinaria і Cladonia arbuscula істотно відрізнялося (Малюнок 4).

    Найбільший вміст усніновой кислоти, витягнутої з біомаси Ramalina pollinaria, було виявлено в бензольному екстракті - 8,3 ± 0,19% проти 4,4 ^ 4,5%, присутніх ацетонове і ЕТАНОЛЬНІЙ екстрактах. У перерахунку на повітряно-суху масу лишайника зміст усніновой кислоти склало: 0,53% при екстракції ацетоном; 0,34% - етанолом і 0,13% - бензолом. Бензоловий екстракт з Cladonia arbuscula містив 95,6 ± 0,16% усніновой кислоти; ацетоновий - 87,4 ± 0,24%; етанольний - 24,9 ± 0,39%, що в перерахунку на повітряно-суху масу лишайника склало 1,24%, 2,54% і 0,71%, відповідно.

    120 100 80 60 40 20 0

    95,6

    4,4 4,5

    8,3

    J_i

    Ramalina pollinaria

    87,4

    24,9

    Cladonia arbuscula

    I ацетон ч етанол і бензол

    Малюнок 4. Ефективність вилучення усніновой кислоти різними розчинниками з біомаси ЯатаІпа роШпапа і С1аёота агЬшоиШ.

    висновки

    Оцінювали ефективність вилучення ацетоном, етанолом та бензолом усніновой кислоти з біомаси Evernia prunastri, Ramalina pollinaria і Cladonia arbuscula методами холодної мацерації біомаси відповідним розчинником і екстракції в апараті Сокслета - безпосередньо і з попередньої холодної мацерацією біомаси гексаном.

    За змістом усніновой кислоти в екстракті найбільш ефективним для екстракції біомаси Evernia prunastri був метод холодної мацерації ацетоном - до 4,6% .; для біомаси Ramalina pollinaria - метод попередньої холодної мацерації гексаном протягом 7 діб з наступною екстракцією етанолом в апараті Сокслета - 10,1%; для біомаси Cladonia arbuscula - метод холодної мацерації бензолом - до 96,0%.

    Ефективність вилучення усніновой кислоти з біомаси Evernia prunastri і Ramalina pollinaria була найбільшою в разі використання методу холодної мацерації гексаном протягом 7 діб з наступною екстракцією етанолом в апараті Сокслета - до 0,43% і 1,81% повітряно-сухої маси лишайника, відповідно. З біомаси Cladonia arbuscula найбільш ефективно усніновая кислота витягалася методом холодної мацерації ацетоном - до 2,54% повітряно-сухої маси лишайника.

    Список літератури:

    1. Huneck S., Yoshimura I. Identification of lichen substances // Identification of lichen substances. Springer, Berlin, Heidelberg, 1996. P. 11-123.

    2. Jin J. Q., Rao Y., Bian X. L., Zeng A. G. (2013). Solubility of (+) - usnic acid in water, ethanol, acetone, ethyl acetate and n-hexane // Journal of Solution Chemistry. 2013. V. 42. №5. P. 1018-1027.

    3. Smith C. W. et al. Lichens of Great Britain and Ireland. British Lichen Society, 2009.700 p.

    4. Nash III, T. H. Lichen biology. Cambridge University Press, 1999. 486 p.

    5. Тарасова В. Н., Соніна А. В., Андросова В. І. Лишайники: фізіологія, екологія, Лихеноиндикация. Петрозаводськ: Вид-во ПетрГУ, 2012. 368 с.

    6. Прокоп'єв І. А., Шеїн А. А., Філіппова Г. В., Філіппов Е. В., Шашурін М. М., Гладкіна Н. П. Річна динаміка змісту усніновой кислоти в талломах лишайників пологів Cladonia і Flavocetraria, які ростуть у центральній Якутії // Хімія рослинної сировини. 2015. №4. С. 45-49.

    7. Моїсеєва Є. М. Біохімічні властивості лишайників і їх практичне значення. М., Л .: Изд-во АН СРСР, 1961. 90 с.

    8. Соколов Д. Н., Лузіна О. А., Салахутдинов Н. Ф., усніновая кислота: отримання, будова, властивості і хімічні перетворення // Успіхи хімії. 2012. Т. 81. Вип. 8. С. 747 768.

    9. Molnar K., Farkas E. Depsides and depsidones in populations of the lichen Hypogymnia physodes and its genetic diversity // Annales Botanici Fennici. Finnish Zoological and Botanical Publishing Board. 2011. V. 48. №6. P. 473-482.

    10. Цуріков А. Г., Храмченкова О. М. Лишайники Гомеля // Наука та інновації, 2011. №6 (100). С. 68-71.

    11. Цуріков А. Г., Храмченкова О. М. До епіксільних Ліхенофлора деяких соснових лісів Гомельської області // Проблеми лісознавства і лісівництва: Зб. наукових тр. ІЛ НАН Білорусі. Вип. 72. Гомель: ІЛ НАН Білорусі, 2012. С. 557-565.

    12. Orange A., James P. W., White F. J. Microchemical methods for the identification of lichens. London: British Lichen Society, 2001. 101 p.

    13. Голубкова Н. С. та ін. Визначник лишайників СРСР. Вип. 5. Кладоніевие -Акароспоровие / під. ред. І. І. Абрамова. Л .: Наука, 1978. 304 с.

    14. Голубкова Н. С. та ін. Визначник лишайників Росії. Вип. 6. Алекторіевие, Пармеліевие, Стереокаулоновие / під. ред. Н. С. Голубкової. СПб .: Наука, 1996. 203 с.

    15. Андрєєв М. П. та ін. Визначник лишайників Росії. Вип. 10. Agyriaceae, Anamylopsoraceae, Aphanopsidaceae, Arthrorhaphidaceae, Brigantiaeaceae, Chrysotrichaceae, Clavariaceae, Ectolechiaceae, Gomphillaceae, Gypsoplacaceae, Lecanoraceae, Lecideaceae, Mycoblastaceae, Phlyctidaceae, Physciaceae, Pilocarpaceae, Psoraceae, Ramalinaceae, Stereocaulaceae, Vezdaeaceae, Tricholomataceae / під. ред. Н. С. Голубкової. СПб .: Наука, 2008. 515 с.

    16. Вайнштейн Е. А. і ін. Довідковий посібник з хемотаксономіі лишайників (методичний посібник) / під. ред. Н. С. Голубкової. Л .: БІН АН СРСР, 1990. 152 с.

    17. Elix J. A. A Catalogue of Standardized Thin Layer Chromatographic Data and Biosynthetic Relationships for Lichen Substances. Canberra: Australian National University, 2014. 330 p.

    18. Ji X., Khan I. A. Quantitative determination of usnic acid in usnea lichen and its products by reversed-phase liquid chromatography with photodiode array detector // Journal of AOAC International. 2005. V. 88. №5. P. 1265-1268.

    19. Спосіб отримання екстракту з дубового моху: пат. 2348683 РФ, МПК С11В 1/10, C1m 9/02 / ГОУВПО «КубГТУ». №2007120383 / 13; заявл. 31.05.2007.

    References:

    1. Huneck, S., & Yoshimura, I. (1996) Identification of Lichen Substances. In: Identification of Lichen Substances. Springer, Berlin, Heidelberg, 11-123.

    2. Jin, J. Q., Rao, Y., Bian, X. L., & Zeng, A. G. (2013). Solubility of (+) - usnic acid in water, ethanol, acetone, ethyl acetate and n-hexane. Journal of Solution Chemistry, 42 (5), 1018-1027.

    3. Smith, C. W., & al. (2009). Lichens of Great Britain and Ireland. British Lichen Society.

    700.

    4. Nash III, T. H. (1999). Lichen biology. Cambridge University Press, 486.

    5. Tarasova, V. N., Sonina, A. V., & Androsova V. I. (2012). Lichens: physiology, ecology, lichenindication. Petrozavodsk, Publishing House of PetrSU, 368.

    6. Prokopiev, I. A., Shein, A. A., Filippova, G. V., Filippov, E. V., Shashurin, M. M., & Gladkina, N. P. (2015). Annual dynamics of content of usnic acid in thallomes of lichens of the genera Cladonia and Flavocetraria, growing in central Yakutia. Chemistry of plant raw materials, (4). 45-49.

    7. Moiseeva, E. N. (1961). Biochemical properties of lichens and their practical burning. Publishing house of the Academy of Sciences of the USSR, 90.

    8. Sokolov, D. N., Luzina, O. A., & Salakhutdinov, N. F. (2012). Usnic acid: Preparation, structure, properties and chemical transformations. Russian Chemical Reviews, 81 (8), 747-768.

    9. Molnar, K., & Farkas, E. (2011, December). Depsides and depsidones in populations of the lichen Hypogymnia physodes and its genetic diversity. Annales Botanici Fennici, 48 (6), 473-482.

    10. Tsurikov, A. G., & Khramchenkova, O. M. (2011). Gomel lichens. Nauka i innovatsii, (6), 68-71.

    11. Tsurikov, A. G., & Khramchenkova, O. M. (2012). To the epixial lichen flora of some pine forests of the Gomel region. Problems offorestry, Coll. IL NAS of Belarus, issue 72. Gomel: IL of the National Academy of Sciences of Belarus, 557-565.

    12. Orange, A., James, P. W., & White, F. J. (2001). Microchemical methods for the identification of lichens. London, British Lichen Society, 101.

    13. Golubkova, N. S., & al. (1978). The determinant of lichens of the USSR. Issue. 5. Cladonia - Acarospore. Ed. Abramov, I. I. Leningrad, Nauka, 304.

    14. Golubkova, N. S., & al. (1996). The determinant of lichens of Russia. Issue. 6. Alectorium, Parmelian, Stereocaulonian. Ed. Golubkova N. S. St. Petrrsburg, Nauka, 203.

    15. Andreev, M. P., & al. (2008). The determinant of lichens of Russia. Issue. 10. Agyriaceae, Anamylopsoraceae, Aphanopsidaceae, Arthrorhaphidaceae, Brigantiaeaceae, Chrysotrichaceae, Clavariaceae, Ectolechiaceae, Gomphillaceae, Gypsoplacaceae, Lecanoraceae, Lecideaceae, Mycoblastaceae, Phlyctidaceae, Physciaceae, Pilocarpaceae, Psoraceae, Ramalinaceae, Stereocaulaceae, Vezdaeaceae, Tricholomataceae. Ed. Golubkova, N. S. St. Petersburg, Nauka, 515.

    16. Vainshtein, E. A., & al. (1990). A reference guide on the chemotaxonomy of lichens (methodical manual). Ed. Golubkova, N. S., Leningrad, BIN AN SSSR, 152.

    17. Elix, J. A. (2014 року). A catalogue of standardized chromatographic data and biosynthetic relationships for lichen substances. Canberra, Australian National University, 330.

    18. Ji, X., & Khan, I. A. (2005). Quantitative determination of usnic acid in usnea lichen and its products by reversed-phase liquid chromatography with photodiode array detector. Journal of AOACInternational, 88 (5), 1265-1268.

    19. Method for obtaining extract from oak moss: pat. 2348683 RF, IPC C11B 1/10, C11B 9/02 / SEIHPO "KubGTU". No. 2007120383/13; claimed. 31.05.2007.

    Робота надійшла Прийнята до публікації

    до редакції 26.04.2018 р 02.05.2018 р.

    Посилання для цитування:

    Храмченкова О. М., Новиков Р. І. Аналіз ефективності вилучення усніновой кислоти з лишайників Білоруського Полісся // Бюлетень науки і практики. 2018. Т. 4. №6. С. 23-32. Режим доступу: http://www.bulletennauki.com/khramchankova-om (дата звернення 15.06.2018).

    Cite as (APA):

    Khramchankova, V., & Novikau, R. (2018). Extraction efficiency analysis of usnic acid from lichens of Belarusian Polesie. Bulletin of Science and Practice, 4 (6), 23-32.


    Ключові слова: лишайники / LICHENS / другорядні метаболіти / SECONDARY METABOLITES / усніновая КИСЛОТА / USNIC ACID / ЕКСТРАКЦІЯ / EXTRACTION / МЕТОДИ / METHODS / ХІМІЧНИЙ ВИХІД / CHEMICAL YIELD / ВЕРХ / HPLC / КОНЦЕНТРАЦІЯ усніновая КИСЛОТИ / USNIC ACID CONCENTRATION

    Завантажити оригінал статті:

    Завантажити